以下是2023.11.18新版:ELISA實驗的原理總結：

ELISA 即酶聯(lián)免疫吸附測定，是一類常用的免疫酶技術。主要方法是將已知的抗原或抗體吸附在固相載體表面，然后利用酶標記（偶聯(lián)）的抗體或抗原與之孵育，加入顯色劑顯色，通過酶標儀測定待測物顏色與標準物顏色的差異，繪制出酶活曲線得出待測物濃度。

一、四種常見ELISA方法:

1.直接ELISA

將抗原固定于ELISA板上，然后用酶標抗體直檢測抗原。相較于其它類型的ELISA實驗，直接ELISA實驗步驟少，檢測速度快，不需要用到二抗，避免了交叉反應，測定結果不容易出錯。但是由于直接ELISA的抗原不是特異性固定的，樣本中的靶蛋白及其他雜質(zhì)蛋白都會與ELISA板結合，實驗背景會比較高。而且直接ELISA每種靶蛋白都需要準備能夠與其特異性結合的一抗，實驗不太靈活。另外由于沒有使用二抗，信號沒有被放大，降低了測定的靈敏度。

2.間接ELISA

先將抗原結合到ELISA板上，隨后分兩步進行檢測：首先加入檢測抗體與抗原特異性結合，隨后加入酶標二抗檢測并利用底物顯色。與直接ELISA相比，間接ELISA用到酶標二抗，具有更高的靈敏度，也需要更少的標記抗體，更經(jīng)濟。間接ELISA還提供了更大的靈活性，因為不同的一抗能夠與單一標記的二抗一同使用。間接ELISA實驗的缺點是存在交叉反應的可能性（酶標二抗直接與抗原結合），可能會增加背景，同時與直接ELISA相比，間接ELISA實驗多了二抗孵育的步驟，實驗周期延長。

3.夾心ELISA

先將捕獲抗體固定于ELISA板孔中，然后加入樣品，接著加入檢測抗體。如果檢測抗體是酶標抗體，則可稱為直接夾心ELISA；如果檢測抗體不帶有標記，則還需要使用酶標二抗與檢測抗體結合，這種稱為間接夾心ELISA。夾心ELISA的靈敏度高，它比直接或間接ELISA敏感2-5倍；同時夾心ELISA使用兩種特異性抗體與抗原結合，擁有很高的特異性。另外夾心ELISA能夠通過直接或間接的方式進行檢測，靈活性較高。夾心ELISA的缺點是對配對抗體要求很高，如果沒有標準化的試劑盒或者已經(jīng)通過測試的配對抗體，則需要進行配對抗體定制并進行優(yōu)化，因為降低捕獲抗體與檢測抗體之間的交叉反應是非常重要的。

4.競爭ELISA法

預先將抗原包被在固相載體上，并加入酶標記的特異性抗體。實驗時，加入待檢抗原（或抗體），如果待檢物是抗原，則待檢抗原與預先包被在固相載體上的抗原競爭結合酶標抗體；如果待檢測物是抗體，則待檢抗體就與系統(tǒng)中原有的酶標抗體競爭結合包被在固相載體上的抗原。通過洗滌洗掉被競爭結合的酶標抗體，后加底物顯色。需要注意的是顯色結果與待檢抗原（或抗體）的量成反比。競爭ELISA相對以上介紹的三種方法更復雜一些，但以上三種ELISA類型都適用于競爭ELISA的形式。其主要優(yōu)點在于可檢測不純的樣品，且數(shù)據(jù)再現(xiàn)性高，但存在整體敏感性和專一性較差的問題。

二、ELISA常見問題與解決方法

（1）陰性對照出現(xiàn)陽性結果

1.樣品、試劑被污染，或加樣時操作不當導致相鄰孔之間溶液濺灑出現(xiàn)交叉污染——更換試劑，小心操作。

2. 酶標板洗滌不chedi——洗板前先將抗體溶液倒干凈，然后清洗液倒?jié)M板孔，確保能充分洗滌。

3.抗體量過多導致非特異性結合——根據(jù)說明書的推薦量使用抗體，稀釋抗體到適當濃度。

（2）酶標板整體背景高

1.抗體非特異性結合——應確保板孔進行了封閉并且使用的是恰當?shù)姆忾]液以防止非特異性結合。

2.底物結合濃度過高——對底物進行適當稀釋。

3.反應時間過長——當酶標板顯色足夠進行吸光度讀數(shù)時立即使用終止液終止反應，適當縮短顯色時間。

4.底物溶液污染——正常底物溶液應是澄清透明的，若出現(xiàn)黃色或其他顏色表明受到污染，應更換新的底物溶液。

5.底物孵育過程沒有避光——底物孵育應在避光條件下進行。

（3）復孔之間重復性差

1.樣品數(shù)量不整齊，加樣時間有長有短——加重復孔時盡量保持加樣時間與第一次接近。

2.加樣量不一致——樣品稀釋前應充分混勻，并且使用同一移液槍。

3.洗滌條件、操作人員不一致——重復測定樣品時，操作條件、人員應盡可能與上次保持一致。

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